HPLC-MS/MS Gefahr gebannt? Bienenschädigende Neonicotinoide automatisiert bestimmen

Weil sie Bienen schädigen, hat die Europäische Union den Feldeinsatz dreier Schädlingsbekämpfungsmittel der Gruppe der Neonicotinoide untersagt. Analytisch lässt sich das Verbot mittels HPLC-MS/MS überwachen. Die Automatisierung der Probenvorbereitung macht dabei Sinn.

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Redaktionsbüro Guido Deußing

Der Einsatz von Insektiziden in der Landwirtschaft sollte sich eigentlich positiv auf die Ernteerträge auswirken. Was aber, wenn ein Pflanzenschutzmittel nicht nur schädliches, sondern auch nützliches Getier überaus wirksam bekämpft und schädigen kann – Wild- und Honigbienen etwa, die ihrer natürlichen Bestäubungsarbeit wegen einen essenziellen Beitrag für den Ernteerfolg leisten? Aus eben diesem Grund haben die Mitgliedsstaaten der Europäischen Union (EU) den Einsatz bestimmter Neonicotinoide verboten. Es handelt sich dabei um die drei hochwirksamen Insektizide Thiamethoxam, Imidacloprid und Clothianidin, die seit Sommer 2018 nicht mehr auf den Feldern in der EU ausgebracht werden dürfen – weder als Beigabe von Saatgut, noch als Spritzmittel. Weitere Mitglieder der Gruppe der Neonicotinoide stehen derweil bereits unter Beobachtung.

Die drei bekanntermaßen und dem Bann der EU unterworfenen „bienenkillenden“ Wirkstoffe dürfen nicht mehr im Freiland eingesetzt werden, wohl aber noch in Gewächshäusern. Jedes Verbot ist aber nur so wirksam, wie sich seine Einhaltung überprüfen lässt, was erforderlich ist, vor allen Dingen dann, wenn die Anwendung einer Substanz in Ausnahmen und damit auch ihr Eintrag in die Umwelt möglich ist.

Das in Geestland bei Bremerhaven ansässige, auf die Lebensmittel- und Umweltanalytik spezialisierte Auftragslabor Tela, hat den Nachweis von Neonicotinoiden ins Leistungsspektrum aufgenommen. Im Hinblick auf die laborspezifischen Anforderungen orientierte sich das Unternehmen bei der Methodenentwicklung an gängigen Verfahren, wie Dr. Norbert Helle berichtet. Sein Augenmerk habe dabei nicht allein auf der Machbarkeit der Analytik gelegen, schildert der promovierte Chemiker und Geschäftsführer der Tela, sondern auch auf deren Effizienz. Dabei spielte die Geschwindigkeit eine Rolle, also nach welcher Zeit zuverlässig verwertbare Messergebnisse vorliegen, wie auch der Arbeits- und Zeitaufwand, der zu betreiben ist, um Kundenanfragen in einem adäquaten Rahmen zu beantworten. „Das heißt, für uns nimmt die Automatisierung der Analytik eine wichtige Rolle ein, darüber hinaus aber auch die Flexibilität, Methoden bei Bedarf auf weitere Analyten und Fragestellungen ausweiten zu können“, sagt Helle.

Neonicotinoid-Analytik per Quechers-Methode

Flexibilität bedeutet für Tela u.a. auch, Analyten möglichst wahlweise sowohl mittels HPLC-MS/MS als auch mittels der GC-MS/MS bestimmen zu können. Im Fall der Neonicotinoide wurde ein schnelles Analysenverfahren mittels HPLC-MS/MS präferiert. Bei ihrer Vorbereitung griffen die Lebensmitteltechnologien- und Applikationsexpertin Franziska Chmelka und Kollegen auf die Erfahrungen zurück, die sie bereits bei der Analyse eines anderen Insektizids, namentlich Fipronil, gesammelt hatten [1]. Dieses weist Ähnlichkeiten gegenüber den Neonicotinoiden in puncto Toxizität, physikochemischer Wirkung und Verbreitung in der Umwelt auf.

Bei der Analyse von Fipronil, wie auch bei Pestiziden allgemein, erweist sich die QuEChERS-Methode [2] als Mittel der Wahl. Das Akronym steht für Quick, Easy, Cheap, Effective, Rugged, Safe und beschreibt die Eigenschaften des zugrundeliegenden Extraktionsprozesses. Kennzeichen der Quechers-Methode ist der Einsatz einer dispersiven Festphasenextraktion (SPE), die vor allem dazu dient, störende Matrixkomponenten aus der Probe zu entfernen und einen für die anschließende Analyse erforderlichen sauberen Extrakt zu erhalten.

Die Bestimmung von allgemein gesprochen Pestiziden gemäß der klassischen Quechers-Methode aus Lebensmittelproben, gestaltet sich wie folgt: 10 g homogenisierte Probe werden mit 10 mL Acetonitril und dem internen Standard versetzt, mittels Vortex durchmischt und extrahiert. Anschließend werden Magnesiumsulfat und Natriumchlorid zur Probe dosiert. Sie wird erneut geschüttelt und dann zentrifugiert. Die Salzzugabe ermöglicht die Trennung der Acetonitril- und Wasserphase (untere Phase). Ein Aliquot des Überstandes wird entnommen, mit Magnesiumsulfat und einem geeigneten Sorbens versetzt (was den dispersiven Charakter dieser SPE-Methode erklärt), um die mitextrahierten Matrixbestandteile selektiv zu entfernen. Der Extrakt wird geschüttelt und zentrifugiert. Der Überstand kann schließlich zur chromatographischen Untersuchung eingesetzt werden: mittels GC/MS (nach Einengen des Extrakts und Wiederaufnahme in Hexan) oder LC/MS (Extrakt mit Wasser verdünnt).

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